檢驗科標本采集SOP文件

患者采血前的準備

　　1. 一般要求：病人在采血前 24h 內應避免運動和飲酒，不宜改變飲食習慣和睡眠習慣。靜脈血標本采集最好在起床后 1h 內進行。采血時間以上午 7~9 時較為適宜。門診病人提倡靜坐 15 分鐘后再采血。

　　2. 采血時間：有些血液成份日間生理變化較大，因此應相對固定采血時間，一般以清晨空腹抽血為宜〈急癥項目除外〉。

　　3. 患者體位：有些血液成份存在立位與臥位之間的差異，為減少這種影響，取血病人的體位應相對固定。一般采用坐位取血，而且取血前應讓病人有 10 分鐘的時間穩定自己的體位。

　　4. 劇烈的運動：激動的情緒都會影響到一些血液成份濃度的變化，取血的當晨病人不宜做劇烈的運動，避免情緒激動，取血前應有 10 分鐘的休息。

　　5. 輸液的影響：由于邊輸液邊采血影響血液成份的測定!規定輸液時應在輸液的另一側手臂取血。

　　6. 生活方式的影響：煙、酒、咖啡及高脂、高糖飲食，可使血液中某些成份高于正常，需與一般病理情況相區別，取血前幾日應注意避免。

　　7. 生理差別的影響：不同年齡組的個體及婦女的妊娠期、月經期，血液成份有一定的生理差異，應注意與病理情況區別。

　　8. 葡萄糖耐量測定：試驗前三天正常飲食，試驗當日清晨空腹抽血 2mL，并同時留尿。將 100 克葡萄糖溶于 300mL 溫水中囑病人一次服下，立即記錄時間;然后分別在服糖后 60、120、180 分鐘，各抽血 2ml，并每次同時留取尿液，注名管號和杯號，立即送檢，分別測定血糖及尿糖。

　　靜脈血液采集作業指導書

1.目的

　　抽取靜脈血標本以做各項檢驗。

2.適用范圍

　　適用于本科做生化、免疫、血常規等項目所需血液標本的采集。

3.物品準備

　　止血帶、一次性墊巾、無菌棉簽、復合碘消毒液、一次性采血針、負壓真空管(數量和種類根據要求選取后檢查滅菌日期、有效期及有無漏氣)、試管架、編號筆、口罩。

4.檢驗申請單填寫要求

　　4.1 檢驗申請單用鋼筆填寫，使用正楷字，字跡清楚，填寫完整。

　　4.2 填寫內容包括：受檢者姓名、性別、年齡、臨床診斷、送檢標本、檢驗項目、標本采集年月日時、申請醫生及采樣者簽名。

5.操作步驟

　　5.1 查對檢驗申請單、受檢者姓名及是否已按醫囑準備，向受檢者解釋操作目的，以取得合作。在采血管上貼好與檢驗申請單相對應的標簽。

　　5.2 選擇血管，常用肘窩靜脈、肘正中靜脈、前臂內側靜脈，小兒可采用頸外靜脈、大隱靜脈。

　　5.3 在穿刺部位肢體下放一次性墊巾、止血帶。

　　5.4 用復合碘棉簽消毒穿刺部位。

　　5.5 在靜脈穿刺部位上方 4~7 厘米處扎止血帶，囑受檢者握緊拳頭，使靜脈充盈顯露。

　　5.6 穿刺：推薦使用真空采血技術。摘掉靜脈穿刺針上的保護套，進行靜脈穿刺，穿刺成功后，用貼好標簽的負壓真空管采集靜脈血，松開止血帶，受檢者松拳，用棉簽壓住進針處，拔出針頭，囑采血對象按壓 2~3 分鐘。

　　5.7 為受檢者整理衣袖。

　　5.8 采血完畢后，產生的醫療垃圾按規定分類處理。

6.注意事項

　　6.1 采血前應核對好姓名和檢驗項目，明確標本要求。

　　6.2 抗凝管收集血標本后，立即將試管輕輕顛倒 5～6 次，使血液與抗凝劑充分混勻。

　　6.3 一般生化、免疫檢驗用干燥非抗凝管收集標本，采樣量 3~5mL。若檢驗項目較多，應適當增加采樣量。

　　6.4 血常規檢驗用 EDTAK2 抗凝管收集標本，采樣量 0.5~1 毫升。

　　6.5 凝血四項、血紅蛋白電泳、3P 試驗用枸櫞酸鈉(0.2mL)抗凝管收集標本，采樣量必須準確，為 1.8mL。血沉用枸櫞酸鈉 0.4mL 抗凝，抽血 1.6mL。

　　6.6 高鐵血紅蛋白還原試驗(G6PD)以枸櫞酸鈉 0.2mL 抗凝，另加入葡萄糖 20mg，抽靜脈血 1.8mL，混勻。

　　6.7 糖化血紅蛋白測定需用肝素管抗凝。

　　6.8 血液粘度測定需同時抽取血常規、血沉和肝素抗凝血(5mL)三份樣本。

　　6.9 餐后，血糖、血脂可增加而影響測定結果，故一般應空腹抽血。有些食物成分：高蛋白、高脂及飲食可引起血中蛋白、血脂、尿酸增

　　高;香蕉、咖啡等可引起尿中兒茶酚胺代謝產物的測定等。

　　6.10藥物影響：如異菸肼、慶大毒素、氨芐青毒素可使谷丙轉氨酶活性增高、咖啡因可使膽紅素增加。因此，建議檢查前幾天就停止使用有干擾的藥物，且申請單最好能注明近期用藥情況。

7.標本運輸及實驗前存放

　　低溫條件 2~8℃或室溫運輸，1 小時內送檢。

　　1 小時內分離出血清，室溫放置不超過 4 小時，4℃保存不超過 8 小時，長時間保存需在冰凍條件下，且只能凍融 1 次。

8.附加檢驗項目申請

　　8.1 標本采集送出后需附加檢驗項目的，其申請應在標本采集當天上午 11 點 30 分以前電話通知實驗室。

　　8.2 附加檢驗項目申請為本檢驗科目錄外項目的需提前一天與檢驗科聯系，以便聯系其它實驗室進行檢測。

9.其它

　　如分析失敗，將對同一原始樣本進行檢驗。如仍不能發出報告者，分析原因并告知受檢者重新采樣檢驗。

10.相關文件

　　10.1采樣管理程序

　　10.2標本管理程序

11.相關記錄

末梢血采集作業指導書

1.目的

　　采集末梢血標本以做門診血常規檢驗。

2.適用范圍

　　適用于門診檢驗科做血常規等項目所需血液標本的采集。

3.物品準備

　　一次性采血針、75% 酒精、無菌棉球、0.5 毫升離心管

　　(EDTAK2 抗凝管)、試管架、編號筆、微型震蕩器、口罩。

4.檢驗申請單填寫要求

　　4.1 檢驗申請單用鋼筆填寫，使用正楷字，字跡清楚，填寫完整。

　　4.2 填寫內容包括：受檢者姓名、性別、年齡、化驗單編號、臨床診斷、送檢標本、檢驗項目、標本采集標本年月日時、申請醫生及采樣者簽名。

5.操作步驟

　　5.1 查對檢驗申請單、受檢者姓名及是否已按醫囑準備，向受檢者解釋操作目的，以取得合作。

　　5.2 常用選擇無名指，先用酒精棉球消毒，然后用一次性采血針穿刺，讓血液自然流出，用消毒棉球輕拭去第一滴后，將血液收集在 0.5 毫升離心管 (EDTAK2 抗凝管)，約 0.2~0.3 毫升。

　　5.3 用干棉球壓住穿刺部位，囑采血對象按壓 2~3 分鐘。

　　5.4 在微型震蕩器混勻。馬上送檢。

6.注意事項

　　6.1 采血前應核對好姓名和檢驗項目，明確標本要求。

　　6.2 血常規用 EDTAK2 抗凝管收集血標本后，在微型震蕩器混勻，使血液與抗凝劑充分混勻。

　　6.3 除特殊情況外，不要在耳垂采血。嬰幼兒可自拇指或足跟兩側采血。燒傷患者可根據情況選用皮膚完整的肢體末端。采血部位應無炎

　　癥或水腫。末梢采血不可用力擠壓。

7.標本運輸及實驗前存放

　　立即送檢，如需保存，可置 2~8℃存放不超過 8 小時。

8.其它

　　如分析失敗，將對同一原始樣本進行檢驗。如仍不能發出報告者，分析原因并告知受檢者重新采樣檢驗。

　　9.相關文件

　　9.1采樣管理程序

　　9.2標本管理程序

　　10.相關記錄

動脈血液采集作業指導書

1.目的

　　抽取動脈血標本，主要用做血氣分析。

2.適用范圍

　　適用于血氣分析所需血液標本的采集。

3.物品準備

　　止血帶、一次性墊巾、無菌棉簽、復合碘消毒液、注射器(數量和種類根據要求選取后檢查滅菌日期、有效期及有無漏氣)、試管架、編號筆、口罩。

4.檢驗申請單填寫要求

　　4.1 檢驗申請單用鋼筆填寫，使用正楷字，字跡清楚，填寫完整。

　　4.2 填寫內容包括：受檢者姓名、性別、年齡、臨床診斷、送檢標本、

　　檢驗項目、用藥情況、抽血時的體溫、是否用氧及其流量、標本采集年月日時、申請醫生及采樣者簽名。

5.操作步驟

　　5.1查對檢驗申請單、受檢者姓名及是否已按醫囑準備，向受檢者解

　　釋操作目的，以取得合作。

　　5.2 采血時用 2~5mL 干燥注射器，按無菌手續抽取肝素抗凝素(lmL=1000U，生理鹽水配制)0.2mL，來回抽動針栓，使針管全部濕潤，將多余的肝素排出。

　　5.3 選擇血管，常用股動脈、肱動脈或橈動脈。

　　5.4 用復合碘棉簽消毒穿刺部位。

　　5.5 選擇動脈搏動最強處穿刺。

　　5.6穿刺

　　5.6.1 旋緊持針器上的針頭，摘掉穿刺針上的保護套，試穿刺針是否通暢。

　　5.6.2 進行動脈穿刺，穿刺成功后，采集動脈血 2mL，用棉簽壓住進針處，拔出針頭，囑采血對象按壓 2~3 分鐘。

　　5.7抽出后立即用一橡皮頭封閉針頭，隔絕空氣，將注射器重于手中

　　反復旋轉搓動即達抗凝，立即送檢。

6.注意事項

　　6.1 采血前應核對好姓名和檢驗項目，明確標本要求。

　　6.2采血中注意隔絕空氣，空氣中的氧分壓高于動脈血，二氧化碳分

　　壓低于動脈血，從而使血液中 pO2 及 pCO2 都改變而無測定價值。

　　6.3 立即送檢，血液不得放置過久，否則血細胞繼續新陳代謝，影響數據準確。

　　6.4 若靜脈采血，可將手及前臂浸人 45℃溫水中 20 分鐘，使局部靜脈血動脈化，穿刺時勿用壓脈帶，只能緩緩吸引。

　　6.5 也可將手指或耳垂(嬰兒取足跟、大趾或頭皮)毛細血管熱敷或按摩，充分動脈化，以容量 100µL~140µL 肝素化毛細玻管采血。針刺深度以血液自然流出為宜，收集時切忌氣泡引入毛細玻管。

7.標本運輸及實驗前存放

　　7.1 立即送檢。

　　7.2 如不能及時送檢，應放入冰水中保存(勿用冰快，以防細胞破壞溶血)。

8.其它

　　如分析失敗，將對同一原始樣本進行檢驗。如仍不能發出報告者，分析原因并告知受檢者重新采樣檢驗。

　　9.相關文件

　　9.1采樣管理程序

　　9.2標本管理程序

　　10.相關記錄

尿液標本采集作業指導書

　　1.目的

　　采集尿液標本以做尿液常規、生化檢驗。

　　2.適用范圍

　　適用于本科做尿液常規、生化項目所需尿液標本的采集。

　　3. 物品準備：專用一次性尿杯、編號筆。

　　4. 檢驗申請單填寫要求：

　　4.1 檢驗申請單用鋼筆填寫，使用正楷字，字跡清楚，填寫完整。

　　4.2 填寫內容包括：受檢者姓名、性別、年齡、化驗單編號、臨床診斷、送檢標本、檢驗項目、標本采集標本年月日時、申請醫生及采樣者簽名。

　　5. 操作步驟：

　　5.1 查對檢驗申請單、姓名，向受檢者解釋操作目的，以取得合作。

　　5.2 發一次性尿杯一個給受檢者，囑受檢者留取新鮮尿立即送檢，以清晨第一次中間段尿為宜。

　　5.3 受檢者按要求自己用一次性尿杯留取半杯尿標本交檢驗科編號待檢。

　　6.注意事項

　　6.1 根據采集時間，可分為晨尿、隨機尿、空腹尿、餐后尿、計時尿(2h、3h、12h、24h)等。一般定性分析測定，可在任意時間留取標本。常規定性分析，多采用晨尿。計時尿多用于腎功能和有形成分排出率的估計。許多定量分析需收集 24 小時尿液。微生物檢驗的標本應取尿道排出的中段尿并立即送檢。一般尿液檢查應留取新鮮尿液置清凈、干燥容器中立即送檢。(靜脈滴注大劑量青霉素、VitC 時可影響尿蛋白、尿糖及尿隱血結果，應盡量避免)。

　　6.2 特殊檢驗如尿妊娠試驗、尿糖定性試驗一般應取空腹晨尿送檢。

　　6.3 標本應避免污染。一般定性分析標本，應在留取后馬上檢測。若需保存、或收集 24 小時尿液，原則上應首選 0～4℃冷藏，必要時可添加化學防腐劑。常用的化學防腐劑有：

　　a. 甲苯(或二甲苯)：較常用，如 24h 尿糖定量、尿蛋白定量測定。100mL 尿液中加 1mL。不能制止尿液中已有細菌的繁殖。

　　b. 氯仿：防腐效果較甲苯好。可能干擾尿沉渣鏡檢。

　　c. 鹽酸：分析測定甾體激素及其衍生物或兒茶酚胺以及含氮物質時常選用。100mL 尿液中加 1mL，或 24 小時尿液中 10~15mL。

　　d. 甲醛：100mL 尿液中加 0.5mL。用于 24h 尿無機離子定量及艾迪氏計數測定可干擾尿糖測定和干化學法的白細胞測定。

　　7. 其它：如分析失敗，將對同一原始樣本進行檢驗。如仍不能發出報告者，分析原因并告知受檢者重新采樣檢驗。

　　8.相關文件

　　8.1采樣管理程序

　　8.2標本管理程序

　　9.相關記錄

糞便標本采集作業指導書

　　1.目的

　　采集糞便標本以做糞便常規和其他檢驗。

　　2.適用范圍

　　適用于本科做糞便常規和其他檢驗項目所需糞便標本的采集。

　　3. 物品準備：專用一次性尿杯、編號筆。

　　4. 檢驗申請單填寫要求：

　　4.1 檢驗申請單用鋼筆填寫，使用正楷字，字跡清楚，填寫完整。

　　4.2 填寫內容包括：受檢者姓名、性別、年齡、化驗單編號、臨床診斷、送檢標本、檢驗項目、標本采集標本年月日時、申請醫生及采樣者簽名。

　　5. 操作步驟：

　　5.1 查對檢驗申請單、姓名，向受檢者解釋操作目的，以取得合作。

　　5.2 發一次性尿杯一個給受檢者，囑受檢者留取糞便標本一小時內送檢。

　　5.3 受檢者按要求自己用一次性尿杯留取糞便標本交檢驗科工作人員編號待檢。

　　6.注意事項

　　6.1 糞便常規檢驗留取 5g 左右(指頭大小)，糞便標本應留取新鮮糞便的病理成份，如粘液、血液(紅色或黑色部份);若無病理成分，可各部位取材。不得被其他異物污染，不能從尿布上取糞便標本，不得從尿壺或便盆中取標本。

　　6.2 潛血試驗，應囑患者收集標本前 3 天禁食動物性食物。服用鐵劑、鉍劑、動物血液及綠葉蔬菜等可影響隱血測定應注意避免。

　　6.3 細菌檢查的糞便標本應收集于滅菌封口的容器內，勿混入消毒劑及其它化學藥品。

　　6.4 阿米巴滋養體檢測應注意標本保溫并立即送檢，立即檢測。血吸蟲毛蚴孵化需全量新鮮標本(不少于 30g)。

　　7. 其它：如分析失敗，將對同一原始樣本進行檢驗。如仍不能發出報告者，分析原因并告知受檢者重新采樣檢驗。

　　8.相關文件

　　8.1標本采集管理程序

　　8.2標本管理程序

　　9.相關記錄

前列腺液采集作業指導書

　　1.目的

　　留取前列腺液標本以做各項檢驗。

　　2.適用范圍

　　適用于本科做前列腺液分析各項目所需標本的采集。

　　3. 物品準備：潔凈玻片或試管。

　　4. 檢驗申請單填寫要求：

　　4.1 檢驗申請單用鋼筆填寫，使用正楷字，字跡清楚，填寫完整。

　　4.2 填寫內容包括：受檢者姓名、性別、年齡、臨床診斷、送檢標本、檢驗項目、標本采集年月日時、申請醫生及標本采集者簽名。

　　5. 操作步驟：

　　5.1 查對檢驗申請單、姓名，向受檢者解釋操作目的、注意事項，以取得合作。

　　5.2 由臨床醫生采用前列腺按摩術，采集前列腺液于清潔玻片上(或容器內)立即送檢。

　　6. 標本運輸及實驗前存放：標本應立即送檢。

　　7. 其它：如分析失敗，將對同一原始樣本進行檢驗。

　　8.相關文件

　　8.1標本采集管理程序

　　8.2標本管理程序

　　9.相關記錄

精液采集作業指導書

　　1.目的

　　留取精液標本以做各項檢驗。

　　2.適用范圍

　　適用于本科做精液分析各項目所需精液標本的采集。

　　3. 物品準備：專用潔凈干燥青霉素瓶。

　　4. 檢驗申請單填寫要求：

　　4.1 檢驗申請單用鋼筆填寫，使用正楷字，字跡清楚，填寫完整。

　　4.2 填寫內容包括：受檢者姓名、性別、年齡、臨床診斷、送檢標本、檢驗項目、標本采集年月日時、申請醫生簽名。

　　5. 操作步驟：

　　5.1 查對檢驗申請單、姓名，向受檢者解釋操作目的、注意事項，以取得合作。

　　5.2 發專用干凈青霉素瓶一個給受檢者，自己采用手淫方法取精液盛于干凈小瓶中內，送交門診檢驗室編號待檢。

　　6.注意事項

　　6.1 精液檢驗請一周內禁欲。

　　6.2 不能用安全套取精液送檢。一小時后取結果。(早上 11：00 前送檢，下午 4：30 前送檢)

　　7.標本運輸及實驗前存放

　　7.1 標本立即送檢。

　　7.2 冬季應保溫送檢標本。

　　8. 其它：如分析失敗，將對同一原始樣本進行檢驗。

　　9.相關文件

　　9.1標本采集管理程序

　　9.2標本管理程序

　　10.相關記錄

腦脊液采集作業指導書

　　1.目的

　　抽取腦脊液標本以做常規、生化、免疫、細菌學等項目檢驗。

　　2.適用范圍

　　適用于本科做常規、生化、免疫、細菌學檢驗的腦脊液標本采集。

　　3. 物品準備：一次性墊巾、復合碘消毒液、2﹪利多卡因、血管鉗、無菌洞巾、無菌紗布、無菌棉簽、骨髓穿刺針、口罩、載玻片，試管及無菌管等。

　　4. 檢驗申請單填寫要求：

　　4.1 檢驗申請單用鋼筆填寫，使用正楷字，字跡清楚，填寫完整。

　　4.2 填寫內容包括：受檢者姓名、性別、年齡、臨床診斷、送檢標本、檢驗項目、標本采集年月日時、申請醫生及采樣者簽名。

　　5. 操作步驟：

　　5.1部位

　　5.1.1 以髂后上棘連線與后正中線的交點為穿刺點，相當于第 3～4 腰椎棘突間隙，有時也可在上一或下一腰椎間隙進行。

　　5.2方法

　　5.2.1 患者側臥于硬板床，背部與床面垂直，兩手抱膝緊貼腹部，頭向前胸屈曲，使軀干呈弓形，脊柱盡量后凸以增寬脊椎間隙。

　　5.2.2 常規消毒，戴無菌手套，覆蓋無菌洞巾，用 2%利多卡因自皮膚到椎間韌帶作局部麻醉。

　　5.2.3 術者用左手固定穿刺皮膚，右手持穿刺針以垂直背部方向緩緩刺入，針尖稍斜向頭部，成人進針深度約 4～6 厘米，兒童約 2～4 厘米。當針頭穿過韌帶與硬腦膜時，有阻力突然消失落空感，此時可將針芯慢慢抽出，即可見腦脊液流出。

　　5.2.4 放液前先接上測壓管測量壓力，正常側臥位腦脊液壓力為 70～180mmH2O 或 40～50 滴每分鐘。可作 Queckenstedt 試驗，了解蛛網膜下腔有無阻塞。即在測初壓后，由助手先壓迫一側頸靜脈約 10 秒，再壓另一側，最后同時壓雙側頸靜脈。正常壓迫靜脈后，腦脊液壓力立即迅速升高一倍左右，解除壓迫后 10～20 秒，迅速降至原來水平，稱為梗阻試驗陰性，示蛛網膜下腔通暢。若壓迫頸靜脈后，不能使腦脊液壓力升高，則為梗阻試驗陽性，示蛛網膜下腔完全阻塞。若施壓后壓力緩慢上升，放松后又緩慢下降，示有不完全阻塞。顱內壓增高者，禁作此試驗。

　　5.2.5 撤去測壓管，收集腦脊液 2-5ml 送檢;腦脊液應采集三管，第一管用于細菌培養檢查(無菌操作)，第二管用于常規檢查，第三管用于生化檢查。

　　5.2.6 術畢，將針芯插入后一起拔出穿刺針，覆蓋消毒紗布，膠布固定。

　　5.2.7 去枕平臥 4～6 小時，以免引起術后低顱壓頭痛。

　　6.注意事項

　　6.1 嚴格掌握禁忌癥，凡疑有顱內壓升高者必須先作眼底檢查，如有明顯視神經乳頭水腫或有腦疝先兆者，禁忌穿刺。凡患者處于休克、衰竭或瀕危狀態以及局部皮膚有炎癥，顱后窩有占位性病變者均列為禁忌。

　　6.2 穿刺時患者如出現呼吸、脈搏、面色異常時，應立即停止操作，并作出相應處理。

　　6.3 鞘內給藥時，應先放出等量腦脊液，然后再等量置換性藥液注入。

　　6.4 標本采集前應核對好姓名和檢驗項目，明確標本要求。

　　6.5 收集標本后，必須立即送檢。久置可致細胞破壞，葡萄糖分解，病原菌破壞或溶解。細胞計數標本應注意防止凝集。

　　7.標本運輸及實驗前存放

　　7.1 腦脊液標本應立即送檢。

　　7.2 用于微生物檢驗的標本應注意保溫，不可置冰箱保存。

　　8. 其它：如分析失敗，將對同一原始樣本進行檢驗。如仍不能發出報告者，分析原因并告知受檢者重新采樣檢驗。

　　9.相關文件

　　9.1采樣管理程序

　　9.2標本管理程序

　　10.相關記錄

漿膜腔積液（胸水）采集作業指導書

　　1.目的

　　抽取漿膜腔積液(胸水)標本以做各項檢驗。

　　2.適用范圍

　　適用于本科做生化、免疫、微生物等項目所需的漿膜腔積液(胸水)采集。

　　3. 物品準備：一次性墊巾、復合碘消毒液、2﹪利多卡因、血管鉗、無菌洞巾、無菌紗布、無菌棉簽、胸腔穿刺針、一次性注射器、試管(數量和種類根據要求選取后檢查滅菌日期、有效期及有無漏氣)、試管架、編號筆、口罩。

　　4. 檢驗申請單填寫要求：

　　4.1 檢驗申請單用鋼筆填寫，使用正楷字，字跡清楚，填寫完整。

　　4.2 填寫內容包括：受檢者姓名、性別、年齡、臨床診斷、送檢標本、檢驗項目、標本采集年月日時、申請醫生及采樣者簽名。

　　5. 操作步驟：

　　5.1部位

　　在胸部叩診實音最明顯的部位，一般取肩胛線或腋后線第 7～8 肋間，有時也可取腋中線第 6～7 肋間或腋前線第 5 肋間。

　　5.2方法

　　5.2.1 取坐位，兩前臂置于椅背上，前額伏于前臂上;不能起床者可取半臥位，前臂上舉抱于枕部。

　　5.2.2 常規消毒，拿無菌手套，覆蓋無菌洞巾。

　　5.2.3 用 2﹪利多卡因在下一肋骨上緣的穿刺點自皮膚至胸膜壁層進行局部浸潤麻醉。

　　5.2.4術者以左手食指和中指固定穿刺部位皮膚，右手將穿刺針的三

　　通活栓轉到與胸腔關閉處，再將穿刺針在麻醉處緩緩刺入，當針鋒抵擋感突然消失時，將三通活栓轉至與胸腔相通，進行抽液。注射器抽滿后，轉動三通活栓使其與外界相通，排出液體。如用較粗的長穿刺針代替胸腔穿刺針時，先將針座后連續的橡皮管用血管鉗夾住，然后進行穿刺，進入胸腔后再接上注射器，松開止血鉗，抽吸液體，抽滿后再次夾住橡皮管，取下注射器，將液體注入彎盤，計量及送檢，作培養時應用無菌操作法留標本。

　　5.2.5抽液結束后拔出穿刺針，覆蓋無菌紗布，稍用力壓迫片刻，用

　　膠布固定后囑患者靜臥。

　　6.注意事項

　　6.1手術前向患者說明穿刺目的，消除顧慮，精神緊張者，可于術前

　　半小時給地西泮 10mg，或可待因 30mg 以鎮靜止痛。

　　6.2 術中密切觀察患者反應，如有頭暈、面色蒼白、出汗、心悸、胸部壓迫感等反應，或出現連續性咳嗽、氣促等現象，應立即停止抽液，并皮下注射 0.1%腎上腺素 0.3～0.5mL 或進行其他對癥處理。

　　6.3 一次抽液不應過多，診斷抽液 50～100mL 即可;減壓抽液，首次不超過 600mL，以后每次不超過 1000mL;如為膿胸，每次盡量抽盡。

　　6.4 嚴格無菌操作，操作種防止空氣進入胸腔，始終保持胸腔血壓。

　　6.5 標本采集前應核對好姓名和檢驗項目，明確標本要求。

　　6.6 收集標本后，為防止細胞變性出現凝固或細菌破壞溶解等，必須立即送檢。可于每 1000 mL 標本中加人 EDTA 100mg 抗凝，以利于細胞涂片檢測。

　　7.標本運輸及實驗前存放

　　7.1 低溫條件 2~8℃運輸。

　　7.2 微生物檢驗標本不應置于冰箱內，以免細菌死亡而使培養陰性。

　　8. 其它：如分析失敗，將對同一原始樣本進行檢驗。

　　9.相關文件

　　9.1采樣管理程序

　　9.2標本管理程序

　　10.相關記錄

漿膜腔積液（腹水）采集作業指導書

　　1.目的

　　抽取漿膜腔積液(腹水)標本以做各項檢驗。

　　2.適用范圍

　　適用于本科做生化、免疫、微生物等項目所需的漿膜腔積液(腹水)采集。

　　3. 物品準備：一次性墊巾、復合碘消毒液、2 %利多卡因、血管鉗、無菌洞巾、無菌紗布、無菌棉簽、、胸腔穿刺針、一次性注射器、試管(數量和種類根據要求選取后檢查滅菌日期、有效期及有無漏氣)、試管架、編號筆、口罩。

　　4. 檢驗申請單填寫要求：

　　4.1 檢驗申請單用鋼筆填寫，使用正楷字，字跡清楚，填寫完整。

　　4.2 填寫內容包括：受檢者姓名、性別、年齡、臨床診斷、送檢標本、

　　檢驗項目、標本采集年月日時、申請醫生及采樣者簽名。

　　5. 操作步驟：

　　5.1部位

　　5.1.1 左下腹臍與骼前上棘連線的中、外 1/3 交點。

　　5.1.2 臍與恥骨聯合連線中點上方 1.0 厘米，偏左或偏右 1.5 厘米處。

　　5.1.3 側臥位，在臍水平與腋中線之延長線相交處。此處常用于診斷性穿刺。

　　5.1.4 少量積液，尤其有包裹性分隔時，須在 B 超指導下定位穿刺。

　　5.2方法

　　5.2.1 術前須排尿以防穿刺損傷膀胱。

　　5.2.2 取坐位靠背椅上，衰弱者可取半臥位、平臥位或側臥位。

　　5.2.3 常規消毒，戴無菌手套，覆蓋消毒洞巾，自皮膚至壁層腹膜以 2%利多卡因作局部麻醉。

　　5.2.4術者左手固定穿刺皮膚，右手持穿刺針經麻醉處垂直刺入腹壁，

　　待針尖抵擋感突然消失時，示針尖已穿過壁層腹膜，即可抽取腹水，計量并留樣送檢。診斷性穿刺，可直接用 20mL 或 50mL 注射器及適當針頭進行;大量放液時，可用 8 號或 9 號針，并于針座接一橡皮管接容器。并留取標本送檢，作培養時應用無菌操作法留標本。

　　5.2.5放液后拔出穿刺針，覆蓋消毒紗布，以手指壓迫數分鐘，再用

　　膠布固定。大量放液后，需束以多頭腹帶，以防腹壓驟降。內臟血管擴張引起血壓下降或休克。

　　6.注意事項

　　6.1 術中嚴密觀察患者，如有頭暈、心悸、脈搏增快及面色蒼白等，應立即停止操作，并作適當處理。

　　6.2放液不易過快、過多，肝硬化患者一次放液一般不超過 3000mL，過多放液可誘發肝性腦病和電解質紊亂。

　　6.3 放腹水時若流出不暢，可將穿刺針稍作移動或稍變換體位。

　　6.4 術后囑患者平臥、并使穿刺針孔位于上方以免腹水漏出。

　　6.5 放液前、后均應測量腹圍、脈搏、血壓、檢查腹部體征，以觀病情變化。

　　6.6 有肝性腦病先兆，結核性腹膜炎粘連包塊、包蟲病及卵巢囊腫者禁忌穿刺。

　　6.7 標本采集前應核對好姓名和檢驗項目，明確標本要求。

　　6.8收集標本后，為防止細胞變性出現凝固或細菌破壞溶解等，必須

　　立即送檢。可于每 1000 mL 標本中加人 EDTA 100mg 抗凝，以利于細胞涂片檢測。

　　7.標本運輸及實驗前存放

　　7.1 低溫條件 2~8℃運輸。

　　7.2 微生物檢驗標本不應置于冰箱內，以免細菌死亡而使培養陰性。

　　8. 其它：如分析失敗，將對同一原始樣本進行檢驗。

　　9.相關文件

　　9.1采樣管理程序

　　9.2標本管理程序

　　10.相關記錄

骨髓采集作業指導書

　　1.目的

　　抽取骨髓標本以做骨髓細胞學檢查和血細胞化學染色及細菌學檢驗。

　　2.適用范圍

　　適用于本科做骨髓細胞學檢查和血細胞化學染色及細菌學檢驗的骨髓標本采集。

　　3. 物品準備：一次性墊巾、復合碘消毒液、2%利多卡因、血管鉗、無菌洞巾、無菌紗布、無菌棉簽、骨髓穿刺針、口罩、載玻片。

　　4. 檢驗申請單填寫要求：

　　4.1 檢驗申請單用鋼筆填寫，使用正楷字，字跡清楚，填寫完整。

　　4.2 填寫內容包括：受檢者姓名、性別、年齡、臨床診斷、送檢標本、檢驗項目、標本采集年月日時、申請醫生及采樣者簽名。

　　5. 操作步驟：

　　5.1部位

　　5.1.1 骼前上棘穿刺點，在骼前上棘后 1～2 厘米。

　　5.1.2 髂前上棘穿刺點，位于骶椎兩側，臀部上方突出的部位。

　　5.1.3 胸骨穿刺點，位于胸骨柄或胸骨體相當于第 1、2 肋間隙位置。

　　5.1.4 腰椎棘突穿刺點，位于腰椎棘突突出處。

　　5.2方法

　　5.2.1常規消毒，戴無菌手套，覆蓋無菌洞巾，用 2%利多卡因作局

　　部皮膚，皮下及骨膜麻醉。

　　5.2.2 將穿刺針固定器固定在適當的長度 (胸骨穿刺約 1.0 厘米處，髂骨穿刺約 1.5 厘米處)。用左手食指和中指固定在穿刺部位，以右手持針向骨面垂直刺入 (胸骨穿刺則應保持針體與骨面成 30°～40° 角)，當針尖接觸骨質后則將穿刺針圍繞針體長軸左右旋轉，緩緩鉆刺骨質，當感到阻力消失，且穿刺針已固定在骨內時，表示已進入骨髓腔。

　　5.2.3 拔出針芯，放于無菌盤內，接上干燥的 10mL 或 20mL 注射器，用適當力量抽取，即有少量紅色骨髓液進入注射器中，骨髓吸取量以 0.1～0.2ml 為宜。作培養時應用無菌操作法留標本。

　　5.2.4 將抽取的骨髓液滴于數張載玻片上，數張分別送驗有核細胞計數，形態學及細胞化學染色檢查。

　　5.2.5 抽吸完畢，將針芯重新插入;左手取無菌紗布置于針孔處，右手將穿刺針連同針芯一起拔出，隨即將紗布蓋于針孔上，并按壓 1～2 分鐘，再用膠布固定紗布。

　　6.注意事項

　　6.1 術前應作出凝血檢查，有出血傾向者操作進應特別注意，血友病者禁忌。

　　6.2 注射器及穿刺針必須干燥，以免發生溶血。

　　6.3 穿刺針頭進入骨質后，避免擺動過大，以免折斷;胸骨穿刺不可用力過猛，以防穿透內側骨板。抽取液量如作細胞形態學檢查不易過多;如懷疑有敗血癥，則于涂片后，再接上注射器抽取骨髓液 1.0mL 送骨髓培養。骨髓液抽取后應立即涂片，否則會很快凝固，使涂片失敗。

　　6.4 標本采集前應核對好姓名和檢驗項目，明確標本要求。

　　6.5 收集標本后，必須立即送檢。

　　7. 標本運輸及實驗前存放：低溫條件 2~8℃運輸。

　　8. 其它：如分析失敗，將對同一原始樣本進行檢驗。

　　9.相關文件

　　9.1采樣管理程序

　　9.2標本管理程序

　　10.相關記錄

臨床微生物標本采集作業指導書

　　1.目的

　　采集標本以做臨床微生物檢驗。

　　2.適用范圍

　　適用于本科做臨床微生物項目所需標本的采集。

　　3. 物品準備：無菌試管、血培養瓶等。

　　4. 檢驗申請單填寫要求：

　　4.1 檢驗申請單用鋼筆填寫，使用正楷字，字跡清楚，填寫完整。

　　4.2 填寫內容包括：受檢者姓名、性別、年齡、化驗單編號、臨床診斷、送檢標本、檢驗項目、標本采集標本年月日時、申請醫生及采樣者簽名。

　　5.各類微生物培養標本的采集

　　5.1 血(骨髓)培養標本的采集：

　　嚴格以無菌操作抽取血液(骨髓)，于酒精燈火焰旁，精確而迅速地將標本注入血培養瓶內，并輕輕搖勻，以防凝固，血液量應相當于培液的十分之一，一般以 5mL 為宜，骨髓量一般為 1～2mL。為提高檢出率，應在病人用藥前或發熱高峰時采取標本。

　　5.2 尿液培養標本采集：

　　一般采集中段尿，囑患者用肥皂水及溫開水洗外陰部及尿道口，用無菌紗布拭干，令其排尿，開始排出之尿棄去，而后采集中段尿于無菌培養管內送檢。雙側腎盂尿，由專科醫師采集，標記清楚左、右，以免混淆誤診。

　　5.3 糞便培養標本采集：

　　一般細菌培養，挑取糞便粘液、膿血部分，液態便應挑取絮狀物。無法獲取糞便時，可采取直腸拭子，將棉棒用生理鹽水或甘油緩沖鹽水濕潤，之后插入肛門內 4~5cm，輕輕轉動一圈取出。標本留取后，應及時送檢;防止尿液混入，以防降低檢出陽性率。特殊培養應與實驗室聯系，按有關規定留取標本。

　　5.4 痰液及支氣管分泌物標本的采集：

　　5.4.1 采集痰液標本以清晨為好，囑患者先用溫開水漱口數次，以除去口腔內大部分雜菌，然后用力咳出氣管深部的痰液一口，吐入無菌培養皿內，立即送檢。

　　5.4.2 支氣管分泌物，應由醫師利用支氣管鏡直接自患者支氣管內采取后立即送檢。

　　5.5膿液及創面分泌物標本的采集

　　5.5.1 采取標本時，應盡量揩去病灶表面的污染菌，以免影響檢驗結果。用無菌棉拭采取膿液及病灶分泌物于無菌培養管內送檢，亦可用無菌手術采取組織碎片送檢。

　　5.5.2 膿樣標本，最好用無菌注射器，抽取膿液，如行切開排膿亦可以用無菌棉拭采取標本送檢。

　　5.6咽喉、鼻、耳、眼分泌物標本的采集

　　以無菌棉拭采取患者喉部或鼻、耳、眼部分分泌物，立即送檢。采集標本時應盡量勿使棉拭接觸唾液及口腔其他部位的粘膜，以防唾液的抑菌作用和雜菌污染。

　　5.7生殖器官標本的采集

　　以無菌棉拭采取病灶分泌物于培養管內，立即送檢。做有關性病病原體 PCR 檢測時，取特定容器，按要求留取標本。

　　6. 其它：如分析失敗，分析原因并告知受檢者重新采樣檢驗。

　　7.相關文件

　　8.1采樣管理程序

　　8.2標本管理程序

　　8.相關記錄

篇2:標本采集人員工作職責

1.負責血液標本的采集工作,嚴格無菌操作技術,做到一針見血,防止引起獻血者的不適。

2.負責檢查一次性采血針管,嚴防使用不合格產品。

3.負責標本采集前的核對工作,防止差錯事故的發生。

4.負責標本采集后體檢表及標本的送檢工作,并做好交接記錄。

5.負責工作環境的衛生工作。

篇3:臨床微生物標本采集與送檢規范

臨床微生物標本采集與送檢是目前臨床實驗室診斷質量保證中較為薄弱的環節,嚴重影響臨床微生物學實驗室對感染樣本中致病菌的分離培養的陽性率和醫院感染病原體監控,也影響臨床診斷,合理選用抗菌藥物,降低耐藥菌的產生和提高感染的治愈率,而且對預測或及時發現醫院感染的暴發流行、杜絕感染蔓延、研究醫院感染的發病機制和環節、制定有效的醫院感染控制措施等,均具有十分重要的意義。嚴格實施正確的微生物標本送檢和檢驗方法,是做好醫院感染病原體監測的關鍵。鑒此,希望臨床各科能按照本操作規范采樣送檢。

一、醫院感染標本的采集和運送基本原則

1.發現醫院感染應及時采集微生物標本作病原學檢查,我院總的醫院微生物標本送檢率應不低于70%。

2.盡量在抗菌藥物使用前采集標本。

3.標本采集時應嚴格執行無菌操作,減少或避免機體正常菌群及其他雜菌污染。

4.標本采集后立即送至實驗室,床旁接種可提高病原菌檢出率。

5.以棉拭子采集的標本如咽拭子、肛拭子或傷口拭子,應立即送檢。

6.盛標本容器須經滅菌處理,但不得使用消毒劑。

7.送檢標本應注明來源和檢驗目的,使實驗室能正確選用相應的培養基和適宜的培養環境,必要時應注明選用何種抗菌藥物。

二、常見醫院感染標本送檢方法

1.血液與骨髓

①通常采血部位為肘靜脈。疑似細菌性心內膜炎時,以肘動脈或股動脈采血為宜。切忌在靜脈點滴抗菌藥物的靜脈處采取血標本。

②采血部位的局部皮膚應嚴格消毒。將采集的血液注入血培養基前,應更換針頭或過火消毒針頭。血培養瓶應在避光室溫中保存,不必置冰箱保存。

③每次采血量成人5一10ml,嬰幼兒l一5ml,培養基與血液之比以lO:1為宜,以稀釋血液中的抗菌藥物、抗體等殺菌物質。

④懷疑菌血癥應盡早采血,體溫上升階段采血可提高陽性率,但要防止因等待而延誤時機。對已用抗菌藥物而又不能停藥者,可在下次用藥前采血。

⑤每例病人至少采血兩次,間隔0.5一lh,以利于提高陽性率和區分感染菌與皮膚污染菌。

⑥對疑為細菌性骨髓炎或傷寒病人,在病灶部位或髂前(后)上棘處嚴格消毒后抽取骨髓lml作增菌培養。

2.尿液

①中段尿:女性采樣前應先用肥皂水或0.1%高錳酸鉀溶液沖洗外陰部及尿道口;男性須翻轉包皮沖洗,用O.1%新潔爾滅消毒尿道口.滅菌紗布擦干后收集標本。

②導尿管導尿采樣可減少污染。對留置導尿者,可用碘酒消毒尿道口處的導尿管壁,用空針細針頭斜穿管壁抽吸尿液。或消毒后解開接口,棄去導尿管前段尿液、留無污染的膀胱內尿液數毫升送檢。不可從集尿袋的下端管口留取標本。

③尿厭氧菌培養,或嬰幼兒中段尿采集困難,或培養結果與病情不符時,可經恥骨上皮膚穿刺采集無污染的膀胱內尿液。

④送檢標本以早晨第一次尿液為佳。

⑤室溫下尿標本耽擱稍久,可致尿內細菌濃度明顯增加而影響病原菌與污染菌的區分。不能立即送檢者,可暫存4℃冰箱。

3.痰液

①咳痰:清水反復漱口后用力咳嗽,從呼吸道深部咳出新鮮痰液于無菌容器送檢。痰量極少者可用45℃的lO%氯化鈉溶液霧化吸入導痰。

②對咳嗽乏力或昏迷病人,可用吸痰管經鼻腔或口腔抵達氣管腔內吸引痰液。用纖維支氣管鏡可直接在病灶部位采集高濃度的感染病原菌,但不能完全避免咽喉部正常菌群污染。

③雙側肺部感染伴人工氣道如氣管切開或氣管插管患者,可用吸痰管經人工氣道插至肺支氣管水平吸引痰液。

④對重癥、難治、或伴免疫抑制、或疑似厭氧菌引起的醫院內肺部感染,可采用環甲膜穿刺經氣管吸引(TTA)、經胸壁穿刺肺吸引(LA)、經纖維支氣管鏡或人工氣道作防污染雙套管毛刷(PSB)或防污染支氣管肺泡灌洗(PBAL)采集無口咽部菌群污染的痰液,進行感染病原學診斷。

⑤痰標本不能及時送檢者,可暫存4℃冰箱。如果室溫下延擱數小時,定植于口咽部的非致病菌可呈過度生長,而肺炎球菌、葡萄球菌和流感桿菌檢出率則明顯下降。

4.傷口、燒傷創面與膿液

①用無菌生理鹽水擦洗病灶表面后,用棉拭于取病灶深部的膿液和分泌物,置運送培養基內送檢。

②對未漬破的膿腫宜用碘酒、酒精消毒皮膚后,以無菌注射器抽取膿液送檢:也可于切開排膿時用無菌棉拭子采樣。

5.糞便

①排便后,挑取有膿血、粘液部分的糞便約2—3g(液狀糞便則取絮狀物),盛于滅菌廣口瓶或蠟紙盒送檢。用棉拭子挑取糞便插入Cnry—BLair運送培養基或PH7.0的磷酸鹽甘油中送檢,可提高病原菌檢出率.

②對不易獲取糞便者或嬰幼兒,可用直腸拭于(又稱肛拭)采集。將拭子前端用無菌甘油水濕潤,然后插入肛門約4—5cm(幼兒約2—3cm)處,輕輕旋轉擦取直腸表面粘液后退出置運送培養基內送檢。

6.咽拭、口腔拭子

①病人清水嗽口后.由檢查者將其舌外拉使懸雍垂盡可能向外牽引,棉拭子越過舌根到咽后壁或懸雍垂的后側,反復擦拭數次,插入運送培養基。棉拭子應避免觸及舌、口腔粘膜和唾液。

②對化膿性扁桃體炎或口腔念珠菌病,用棉拭子在病灶部位擦拭數次即可。

7.漿膜腔積液、腦脊液

①漿膜腔積液包括胸水、腹水如心包液、關節液和鞘膜液等.以嚴格無菌操作抽取數毫升液體置無菌試管或小瓶送檢。對易自凝的標本可添加抗凝劑。

②嚴格無菌操作下采取腦脊液數毫升置于無菌試管。標本采集后應立即送檢,以防細菌死亡。疑似有腦膜炎奈瑟菌時,應注意保暖,不可置冰箱保存。

8.生殖道標本

①根據不同感染種類和病變特征采集不同的標本。采集尿道標本時,應先用生理鹽水局部清洗,以無菌棉拭子插入尿道口l一2cm停留十余秒鐘。輕輕旋轉拭子后退出.

②對外陰部糜爛、潰瘍者,經生理鹽水清洗后用棉拭子擦取病灶邊緣的分泌物。

③陰道和官頸口分泌物須在窺陰器下用長棉拭子采集。

④子宮內分泌物需用無菌導管抽取.導管外套一層保護膜,插入子宮后再刺穿該膜予負壓吸引,可減少陰道菌群污染。

⑤女性盆腔膿腫,應在陰道局部消毒后,由直腸子宮凹陷處進針抽取。

⑥前列腺液需進行前列腺按摩獲取。

9.組織標本

①表淺的感染組織和各種竇道標本可用棉簽擦拭、小刀刮取、穿刺抽吸或手術切除。對竇道和痰管應深部刮取管壁組織。

②深部組織標本可經皮膚穿刺采集或手術切取。標本置無菌容器并加少量生理鹽水以保濕度,或置肉湯增菌液,或置血平皿送檢。

③尸檢標本應于死后20h內采取,以防腸道等菌群侵入引起污染。

④作病原體分離的組織標本,不可用福爾馬林固定。疑有污染的較大組織塊,可用燒紅的烙鐵燒灼其表面或置沸水中5—10秒鐘使表面變白消除污染后,再用無菌器械切開組織,取中央部位組織送檢。

10.靜脈導管

從病人體內拔出靜脈插管,用無菌技術剪去導管體外部分。體內段導管立即置血平皿上作滾動涂布接種。不能作床旁接種者,將導管置含有少量生理鹽水的無菌試管內送檢。也可將剪下的導管體內段置肉湯增菌液或置于血培養液內,但不能區分導管感染菌與少量的定植菌。